Практикум по физиологии растений - Третьяков Н.Н.
ISBN 5-10-001653-1
Скачать (прямая ссылка):
Затем песок, смешанный с питательным раствором, насыпают в сосуд слоем 3.. .4 см и сильно уплотняют. Прибавляют еще песок, уплотняя его тыльной стороной руки, и так постепенно набивают сосуд. Уровень песка должен быть на 1,5.. .2 см ниже верхнего края сосуда. Если песок будет недостаточно и неравномерно уплотнен, то при поливе ом осядет и повредит корни. Посев выполняют отобранными наклюнувшимися семенами. Для этого в песке стеклянной палочкой делают в каждом сосуде по десять лунок, высевают в них семена пшеницы, заравнивают лунки и поливают сверху, расходуя 40 мл воды на сосуд.
На сосуд наклеивают этикетку с указанием факультета, номера группы и фамилии экспериментатора, даты закладки и варианта опыта, поливной массы сосуда. До появления всходов сосуды накрывают бумагой для предохранения от подсыхания поверхности песка. Поливают, опрыскивая небольшими порциями воды.
Как только появятся всходы, бумагу с сосудов снимают и переходят на полив по массе. Поливают сосуды попеременно: четыре-пять раз подряд через трубку, затем 0дин1два раза сверху, чтобы питательные соли не скапливались в верхней или нижней части сосуда. Поливать 'одновременно сверху и снизу, как это иногда рекомендуют, не следует, потому что при этом в середине сосуда «запирается» воздух и увлажнение данного
слоя затрудняется. Несколько дней после появления всходов растения поливают во всех сосудах равным количеством воды до влажности 60 % НВ.
Через неделю после появления всходы прореживают, оставляя в сосуде по четыре одинаковых растения, и переводят на разные режимы увлажнения корнеобитаемой среды (полив по массе до 60 и 40 % НВ).
Через три недели осуществляют учет показателей водообмена и роста растений с использованием следующих методов: водного потенциала листьев — методом Шардакова, интенсивности транспирации — весовым метадом или транспирометром конструкции А. П. Ваганова, водоудерживающей способности—методом Арланда, подсчета количества устьиц в поле зрения микроскопа, биометрическими измерениями надземной части и корневой системы.
Делают вывод о влиянии влажности корнеобитаемой среды на водообмен и рост растений. Результаты опыта записывают по форме (табл. 23).
23. Влияние влажности почвы на (водообмен и рост растений
« s
И Ш
о ы га я
РЭ о
Сырая масса, г на один сосуд
«J
W
35
а) л со Ь И о ей «3 СЦ &
> {3*к
3 о <*>
5 «I ®
0-4
j и tu
3 я у
т <» У 1*
SS
й> о U3 cd CQ сц
60
40
Материалы и оборудование. Семена пшеницы карликового сорта Канада, растворы солей для питательной смеси Хогланда.
Литровые стеклянные банки, стеклянные трубки для полива, дренаж, марля, чехлы для сосудов и шпагат, песок, цилиндры для определения наибольшей влагоемкости песка, кристаллизаторы, стеклянные колпаки, технические весы, . линейки, весы марки РН-10Ц-13У, оборудование для определения показателен водного режима.
Глава 4
ФОТОСИНТЕЗ
Фотосинтез — процесс усвоения растениями световой энергии и использования ее для образования органических веществ из диоксида углерода и воды. В ходе этого
процесса в атмосферу выделяется кислород. Фотосинтез осуществляется при участии многих ферментов и кофакторов. Условно в нем выделяют две стадии: световую, или фотохимическую, и темновую, или химическую. Первая включает реакции поглощения хлорофиллом и другими пигментами квантов света и последующую трансформацию световой энергии в химическую энергию связей аденозинтрифосфорной кислоты (АТФ) и восстановленного никотинамидадениндинуклеотидфос-фата (НАДФ-Н). В темновой стадии запасенная в форме АТФ и НАДФ-Н химическая энергия используется для восстановления акцептированного диоксида углерода до углеводов и других продуктов.
У высших растений фотосинтез протекает в специальных клеточных органеллах листьев (и других зеленых частей) — хлоропластах, число которых в клетках варьирует в зависимости от вида растения и ткани. В одной клетке листа в среднем присутствует 20.. .30 хлоропластов.
Хлоропласты разных растений могут значительно отличаться по форме, но обычно имеют вид округлых или дискообразных телец диаметром около 5 мкм, толщиной 2.. .3 мкм. Снаружи хлоропласты окружены оболочкой, состоящей из двух мембран — наружной и внутренней. Каждая мембрана образована двумя слоями белков, разделенных бимолекулярным слоем липидов. Внутренняя мембрана ограничивает бесцветную стро-му, в которой располагается много уплощенных мембранных мешочков — тилакоидов, собранных в стопки, называемые гранами. Количество гран может составлять 40.. .50 и более. Число тилакоидов в гране колеблется от пяти-шести до нескольких десятков. Отдельные тилакоиды соседних гран соединены между собой ламеллами — мембранами стромы.
Согласно современным представлениям, в тилакоид-ных мембранах локализованы все фотосинтетические пигменты хлоропласта и ферменты, необходимые для осуществления световых реакций фотосинтеза. В строме содержатся ферменты, участвующие в темновых превращениях диоксида углерода. Таким образом, сложная и тонкая структура хлоропласта обеспечивает пространственное разделение отдельных реакций а тем самым и эффективный ход фотосинтеза в целом. Образующиеся в пластидах продукты ассимиляции транспор-
