Практикум по физиологии растений - Третьяков Н.Н.
ISBN 5-10-001653-1
Скачать (прямая ссылка):
предложенный Донским научно-исследовательским институтом сельского хозяйства; определение повреждения по окрашиванию тканей красителями; по состоянию конуса нарастания.
Успех селекционной работы, выбор агротехнических приемов, повышающих холодо- и морозостойкость, в значительной мере определяются правильностью выполнения анализов. Наиболее объективны прямые полевые исследования. К косвенным методам определения морозоустойчивости относят: определение динамики углеводов, активности p-фруктофуранозидазы, степени скле-рификации узла кущения, выхода электролитов, изменения электрической проводимости тканей, биопотенциалов, хемилюминесценции, поляризации, состояния конуса нарастания и др. Большинство перечисленных методов применимо и к диагностике холодостойкости растений.
Устойчивость к вымоканию и выпреванию определяют обычно при прямых и лабораторных анализах.
Засухоустойчивость. Проблема засухоустойчивости растений актуальна для многих регионов нашей страны с аридным климатом. Засухоустойчивы те растения, которые способны в процессе онтогенеза приспосабливаться к действию засухи и осуществлять в этих условиях рост, развитие и воспроизведение.
Физиологическая засухоустойчивость складывается из способностей растений переносить обезвоживание и действие высоких температур. Поэтому при изучении засухоустойчивости необходимо исследовать как способность выносить обезвоживание, так и перегрев. Для диагностики засухоустойчивости предпочтительнее использовать прямые методы, непосредственно связанные с засухоустойчивостью. К ним относят: определение засухоустойчивости в засушниках; эксикаторный метод определения способности растений выносить обезвоживание; определение водоудерживающей способности; метод коагуляции белков; определение гидрофильности коллоидов цитоплазмы, содержания свободной и связанной воды, эластичности и вязкости протоплазмы; метод крахмальной пробы и др.
Для массового анализа применяют косвенные методы: определения водного потенциала растений; засухоустойчивости по ростовым реакциям, по выходу электролитов, по содержанию статолитного крахмала, по
устойчивости пигментного комплекса, по движению цитоплазмы, по электрическому сопротивлению тканей п др.
Солеустойчивость. Значительное распространение засоленных почв на территории нашей страны и существенное снижение продуктивности сельскохозяйственных культур в этих условиях вызывает необходимость оценки степени солеустойчивости растений. Последнее имеет важное значение для селекции, интродукции и технологии возделывания.
Критерием солеустойчивости растений служит степень снижения продуктивности при засолении по сравнению с продуктивностью на нормальном фоне. Определяют солеустойчивость прямыми, а также менее трудоемкими косвенными методами. На засоленных почвах обычно снижается всхожесть семян, поэтому оценку солеустойчивости выполняют по показателям прорастания семян (энергия прорастания, процент всхожести, скорость прорастания). Из косвенных лабораторных методов наиболее известны: плазмолитический; определения скорости раскрытия устьиц в растворах солей; степени и скорости «выцветания» хлорофилла, количества альбуминов, проницаемости протоплазмы; биохемилюминесценция и др.
Работа 85. ВЫЯВЛЕНИЕ ЗАЩИТНОГО ДЕЙСТВИЯ САХАРОВ НА ПРОТОПЛАЗМУ
Вводные пояснения. При воздействии отрицательных температур на растительные ткани в межклетниках образуется лед, который, оттягивая воду из клеток, обезвоживает протоплазму. При определенной степени обезвоживания, индивидуальной для каждого растительного организма, протоплазма коагулирует.
Кристаллы льда, образующиеся непосредственно в клетках, оказывают механическое воздействие, в результате чего нарушается внутренняя структура протоплазмы, резко повышается ес проиицамость, а при длительной экспозиции на морозе наступает отмирание. Скорость отмирания протоплазмы клеток зависит как от температуры и времени экспозиции, так и от водоудерживающей способности самой клетки. Увеличение количества растворимых сахаров в зимующих органах
растений повышает водоудерживающую способность тканей.
Порядок работы. Из поперечного среза красной столовой свеклы толщиной 0,5 см при помощи пробочного сверла диаметром 5.. .6 мм делают высечки. Тщательно ополаскивают их водой и помещают в три пробирки по три-четыре высечки в каждую. В первую пробирку наливают 5 мл дистиллированной воды, во вторую — 0,5 мл 0,5 М раствора сахарозы, в третью — 5 мл 1М раствора сахарозы. Пробирки этикетируют и на 20 мин погружают в охладительную смесь, состоящую из трех частей льда или снега и одной части поваренной соли. Затем пробирки вынимают из охладительной смеси п размораживают в стакане воды комнатной температуры.
Отмечают различия в интенсивности окрашивания жидкостей в пробирках и объясняют их. Из анализируемых высечек готовят тонкие срезы и рассматривают их под микроскопом при малом увеличении в капле того же раствора, в котором они находились. Подсчитывают общее число клеток в одном поле зрения и число обесцвеченных клеток, из которых вышел антоцпан. Результаты опыта записывают по форме (табл. 71).
