Общая аллергология - Адо А.Д.
Скачать (прямая ссылка):
Влияние синус-нервов и депрессоров аорты на развитие анафилактического шока в зависимости от числа сенсибилизирующих инъекций по Артюсу (1 мл антигена подкожно с шестидневными промежутками между введениями) мы изучали у кроликов. Было найдено, что перерезка этих нервов на ранних сроках сенсибилизации (1—2 инъекции) как до, так и во время анафилактического шока значительно ослабляет развитие гемо-динамических и других его признаков (рис. 71, 72). При многократной сенсибилизации перерезка этих нервов сказывается лишь в некоторой задержке падения артериального давления. Возникает временная установка артериального давления иа постоянном уровне. Перерезка вагуса в условиях примененных нами сроков сенсибилизации ослабляет реактивность животного, а в некоторых случаях вызывает полную его десенсибилизацию.
Из приведенных опытов следует, что на ранних сроках сенсибилизации картина анафилактического шока в значительной степени обязана реакциям с рецепторов рефлексогенных сосудистых зон (и других висцероре-цепторов).
Исключение значительного числа этих рецепторов из их связи с центральной нервной системой мешает развитию анафилактического шока. На более поздних сроках сенсибилизации перерезка вагосимпатикуса или синус-нерва ие в состоянии оказать этого действия. В эти сроки сенсибилизации в патогенез анафилактического шока вовлекаются другие, более мощные механизмы, обеспечивающие его развитие, несмотря на выключение рефлексов с чувствительных сосудистых зон и других висцерорецеп-торов. Для собаки и кролика одним из таких механизмов является соб-
Рис. 72. Изменение кровообращения у кролика, сенсибилизированного лошадиной сывороткой, после разрешающего (введения антигена (без перерезки нерозов).
1 — артериальное давление в бедренной артерии; 2 — абсцисса; 3 — отметка введения внутривенно 2 мл лошадиной сыворотки; 4 — отметка времени 3 с.
ственная анафилактическая реакция органов с гладкой мускулатурой. В поздние сроки сенсибилизации гладкомышечные структуры печеночных вен собаки или сосудов легких кролика способны развивать самостоятельные анафилактические реакции, и анафилактический шок не снимается при выключении рефлексогенных зон сосудов и внутренних органов.
Электрофизиологических исследований раздражающего действия аптигенов на рецепторы немного (Е. А. Громова, 1950; В. И. Киселева* Б. А. Сааков и др., 1957; Т. А. Алексеева, 1961; А. И. Гордиенко и др.)'. Они проводились в основном при неизмененной иммунологической реактивности животных на крупных нервных стволах без расщепления их на отдельные более мелкие пучки волокон. Получились сложные, весьма запутанной конфигурации электрограммы биотоков исследуемых нервов, не позволяющие улавливать различия в характере импульсация, вызываемой каждым отдельным антигеном. Кроме того, при этом возможно вмешательство биотоков постороннего происхождения, например типа ЭКГ, еще больше запутывающих анализируемый материал.
JI. М. Ишимова (1958) производила запись биотоков не с целого синус-нбрва, а 'с отщепленной от него веточки, содержащей небольшое число, волокон исследуемого нерва.
Опыты ставили па кроликах и кошках. Область каротидного синуса изолировали от кровообращения и перфузировали оксигенированным раствором Тиродо. В ряде опытов изолированный каротидный синус с синус-нервом полностью удаляли из организма животного и перфузировали in vitro (в парафиновой ванночке с применением периферического сопротивления по Старлингу). Перфузию проводили при сопротивлении 30— 40 мм рт. ст. для исключения влияния раздражения барорецепторов. Исследуемые волокна синус-нерв а отщепляли от веточки, проходящей меяеду внутренней сонной и затылочной артериями. Биотоки отводили униполярно, индифферентный электрод накладывали иа стенку общей сонной артерии. Запись биотоков проводили иа осциллографе МПО-2 с использованием усилительной установки от энцефалографа. Животных сенсибилизировали лошадиной или бычьей сывороткой по 0,5 мл 3 раза через день подкожпо. Опыты ставили через 15—17 дней после последней сенсибилизирующей инъекции. Кроме специфических антигенов испытывали химические раздражители — дифтерийный токсин и полные антигены дизентерии Флекснера (0,5 мл) или брюшнотифозной палочки (0,5 мл). Все исследуемые вещества вводили в ток перфузии каротидного синуса в объеме 0,5 мл в соответствующих разведениях. Перфузия проходила со скоростью 40—50 капель в минуту.
Поставлено 14 опытов на десенсибилизированных животных (6 кошек и 8 кроликов) и 23 опыта иа животных с измененной иммунологической реаютпзиостыо (5 кошек и 10 кроликов были сенсибилизированы лошадиной сывороткой, 3 кошки и 5 кроликов — бычьей).
У десенсибилизированных животных сывороточные антигены почти не оказывают влияния на хеморецепторы каротидного узла. Они существенно не меняют также возбудимости хеморецепторов узла к ацетилхолину или к никотину или слегка увеличивают возбудимость хеморецепторов к этим раздражителям.
Эти данные полностью подтверждают факты, полученные нами ранее при изучении влияпия сывороточных антигенов иа рефлексы с каротидного синуса па кровообращение и дыхание.
