Научная литература
booksshare.net -> Добавить материал -> Медицина -> Венгеров Ю.Я. -> "Инфекционные болезни национальное руководство" -> 37

Инфекционные болезни национальное руководство - Венгеров Ю.Я.

Венгеров Ю.Я. Инфекционные болезни национальное руководство — ГЕОТАР Медиа , 2009. — 1049 c.
ISBN 978-5-9704-1000-4
Скачать (прямая ссылка): infecionniyebolezni2009.djvu
Предыдущая << 1 .. 31 32 33 34 35 36 < 37 > 38 39 40 41 42 43 .. 637 >> Следующая

Кровь для исследования следует брать у больного в период подъёма температуры тела. Рекомендовано исследовать 4-6 проб крови, взятых с интервалом 4 ч, в целях снижения риска «упустить» транзиторную бактериемию и повышения возможности подтвердить этиологическую роль выделенной из крови условно-патогенной микрофлоры (например, Staphylococcus epidermidis), если эту микрофлору обнаруживают в нескольких пробах венозной крови. В этих же целях целесообразно в условиях отделения реанимации исследование артериальной крови.
Пробу крови (10 мл у взрослого и 5 мл у ребёнка) засевают минимум в два флакона со средой для аэробных и анаэробных микроорганизмов в соотношении 1:10. Современные автоматизированные методы исследования гемокультуры, использующие встроенный в дно флакона колориметрический или флюоресцентный сенсор, и специально разработанные питательные среды позволяют зафиксировать рост микроорганизмов в течение первых 24 ч инкубации.
СМЖ для исследования берёт врач при люмбальной (субокципитальной, род-ничковой) пункции в количестве 1-2 мл в сухую стерильную пробирку. Пробу немедленно доставляют в лабораторию, где её сразу же исследуют. При отсутствии такой возможности материал сохраняют при 35-37 °С в течение нескольких часов. Существенно повышает количество положительных результатов бактериологического исследования посев 1-2 капель СМЖ в пробирку, содержащую полужидкую среду Хоттингера с глюкозой, и в чашку Петри с кровяным агаром. Для пересылки материала используют изотермальные ящики, контейнеры, грелки, термос или любую другую упаковку, где поддерживается температура около 37 °С.
Испражнения для бактериологического исследования отбирают с помощью стерильных деревянных шпателей в количестве 3-5 г в стерильный сосуд с плотно закрывающейся крышкой. Исследование взятого материала необходимо начать как можно быстрее после доставки его в лабораторию (не позже чем через 2 ч). Если невозможно приступить к исследованию в течение 2 ч, следует отобрать небольшое количество материала и поместить его в соответствующую транспортную среду. При отборе испражнений желательно направлять для исследования патологические примеси (слизь, частицы эпителия и др.), избегая попадания в материал примеси крови, обладающей бактерицидными свойствами.
Для взятия материала могут быть использованы ректальные тампоны (с ватным наконечником). Тампон необходимо увлажнить стерильной жидкостью, не обладающей бактериостатическим эффектом, или транспортной средой (но не масляным гелем). Тампон вводят per rectum на глубину 5-6 см и, поворачивая, осторожно извлекают, контролируя появление на тампоне фекальной окраски. Тампон помещают в сухую пробирку, если к исследованию материала приступят в течение 2 ч, в ином случае — в транспортную среду. Забор материала целесообразен при эндоскопическом исследовании (ректороманоскопия, колоноскопия), осо-
ЛАБОРАТОРНЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ
67
бенно с участков патологически изменённой слизистой оболочки (эрозии, язвы, наложения фибрина).
Моча. Среднюю порцию свободно выпущенной мочи в количестве 3-5 мл собирают в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов. Предпочтительно отбирать утренние порции мочи.
Жёлчь собирают во время дуоденального зондирования в процедурном кабинете, отдельно по порциям А, В и С в три стерильные пробирки, соблюдая правила асептики.
Промывные воды желудка собирают в стерильные банки в количестве 20-50 мл. Следует иметь в виду, что промывание желудка в этих случаях проводят только индифферентными (не обладающими бактериостатическим или бактерицидным действием на микроорганизмы) растворами, лучше кипячёной водой без добавления соды, перманганата калия и др.
Мокрота. Утреннюю мокроту, выделяемую во время приступа кашля, собирают в стерильную банку. Перед откашливанием больной чистит зубы и полощет рот кипячёной водой в целях механического удаления остатков пищи, .спущенного эпителия и микрофлоры ротовой полости.
Промывные воды бронхов. При бронхоскопии вводят не более 5 мл 0,9% раствора натрия хлорида с последующим его отсасыванием в стерильную пробирку.
Отделяемое глотки, ротовой полости и носа. Забор материалов производят так же, как для микроскопии.
Забор материала для бактериологического исследования (особенно крови, мочи, СМЖ) следует по возможности производить до начала антибактериальной терапии, так как на фоне лечения частота выделения возбудителя резко снижается.
Исследуемый материал засевают на плотные питательные среды, используя специальные методы для получения роста отдельных колоний микроорганизмов, которые далее отсевают в целях выделения чистой культуры возбудителя.
Определённые виды бактерий выделяют, используя элективные (избирательные) среды, задерживающие рост посторонних микроорганизмов, а также селективные среды, содержащие вещества, стимулирующие рост определённых патогенных микроорганизмов. Выделенные на питательных средах микроорганизмы идентифицируют, т.е. выясняют видовую или типовую их принадлежность, определяют чувствительность к антимикробным препаратам.
Предыдущая << 1 .. 31 32 33 34 35 36 < 37 > 38 39 40 41 42 43 .. 637 >> Следующая

Реклама

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed

Есть, чем поделиться? Отправьте
материал
нам
Авторские права © 2009 BooksShare.
Все права защищены.
Rambler's Top100

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed