Научная литература
booksshare.net -> Добавить материал -> Медицина -> Венгеров Ю.Я. -> "Инфекционные болезни национальное руководство" -> 36

Инфекционные болезни национальное руководство - Венгеров Ю.Я.

Венгеров Ю.Я. Инфекционные болезни национальное руководство — ГЕОТАР Медиа , 2009. — 1049 c.
ISBN 978-5-9704-1000-4
Скачать (прямая ссылка): infecionniyebolezni2009.djvu
Предыдущая << 1 .. 30 31 32 33 34 35 < 36 > 37 38 39 40 41 42 .. 637 >> Следующая

К специальным методам диагностики относят окраску по Цилю-Нильсену, выявляющую кислото- и спиртоустойчивые палочки, в частности микобактерии туберкулёза, которые окрашиваются в красный цвет, а остальные микроорганизмы — в синий.
Дифференцирующими называют методы окраски отдельных элементов бактериальной клетки, например окраска метахроматиновых (волютиновых) включений в бактериях (по Нейссеру, Мейеру), окраска капсул (по Гиссу, Лейфсону, Антони), спор и жгутиков (методы Леффлера, Бейли, Грея и др.), клеточной стенки, хроматиновых (ядерных) элементов (по Романовскому-Пімзе и Пекарскому).
ЛАБОРАТОРНЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ 65
К микроскопическим методам исследования относят иммунофлюоресценцию (люминесцентная микроскопия), которую используют для диагностики бактериальных и вирусных инфекций, применяя антитела, меченные флюоресцирующим красителем. Более подробно метод рассматривается в разделе «Иммунологические методы исследования».
Эффективность микроскопического метода определяют его чувствительность и специфичность. Специфичность метода ограничена возможной ошибочной идентификацией возбудителя из-за артефактов. Для оценки чувствительности имеет значение техника проведения исследования. Например, в диагностике малярии чувствительность исследования крови методом «толстой капли» в 20-40 раз больше, чем исследование методом «тонкого мазка», поскольку микроскопия препарата «толстая капля» позволяет просмотреть больший объём крови и облегчает обнаружение малярийных плазмодиев, их количественную оценку. Тем не менее чувствительность этого метода, проводимого по стандартам ВОЗ (исследование минимум 100 полей зрения в течение минимум 5 мин), все же не превышает 95% из-за неравномерности распределения малярийных плазмодиев в крови, особенно при низком уровне паразитемии.
Важный способ повышения чувствительности микроскопического метода — использование различных способов концентрации, например осаждение или флотация пробы при исследовании кала и фильтрация через миллипоровые фильтры проб крови, мочи, СМЖ.
Повышению эффективности микроскопического исследования способствует количественное определение выявленного паразита в поле зрения или единице объёма исследуемого материала, например при малярии, особенно тропической, важно определение интенсивности паразитемии.
Количественная оценка микрофлоры в мазке и выявление микробных ассоциаций важны в случае необходимости определения этиологической роли условно-патогенных микроорганизмов. Известно, что минимальная определяемая концентрация бактерий в мазке из нативного материала составляет 105 клеток/мл. При обнаружении в исследуемом материале определённого вида условно-патогенных бактерий этиологически значимой считают их концентрацию не менее 10s—106 клеток/мл, поэтому чувствительность микроскопического метода в большинстве случаев удовлетворяет потребностям клинической микробиологии.
Бактериологический метод
Применение бактериологического метода даёт возможность выделить возбудитель в чистой культуре из полученного от больного материала, идентифицировать его на основании изучения комплекса свойств, определить чувствительность к антимикробным препаратам. Большинство бактерий способны к культивированию на различных искусственных питательных средах, исключение составляют лишь хламидии и риккетсии — облигатные внутриклеточные паразиты. Эффективность бактериологического исследования зависит от многих параметров, в том числе от условий сбора материала и его транспортировки в лабораторию.
Основные требования, предъявляемые к отбору и транспортировке материала для бактериологического исследования:
? взятие материала до начала этиотропного лечения;
? соблюдение условий стерильности при сборе;
? техническая правильность сбора;
? достаточное количество материала;
? обеспечение температурного режима хранения и транспортировки;
? сведение к минимуму промежутка времени между сбором материала и посевом на плотные питательные среды.
66 МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ
Транспортировку материала в лабораторию необходимо осуществить как можно скорее (желательно немедленно, но не более чем через 1-2 ч после его взятия). Следует соблюдать определённый температурный режим. Стерильные в норме материалы (кровь, СМЖ) хранят и доставляют в лабораторию при температуре 35-37 °С. Нестерильные материалы (моча, отделяемое дыхательных путей и др.) хранят при комнатной температуре не более 1-2 ч или не более 18 ч при 4 °С (условия бытового холодильника). При невозможности доставить пробы в лабораторию в регламентированные сроки рекомендовано использовать транспортные среды, предназначенные для сохранения жизнеспособности возбудителей в условиях консервации. Например, для испражнений в качестве транспортной среды используют смесь глицерина и изотонического раствора натрия хлорида в соотношении 3:7; транспортная среда Кери-Блера предназначена для всех энтеропа-тогенных бактерий, щелочная пептонная вода — для вибрионов, среды Эймса или Стюарта — для возбудителей инфекций дыхательных путей.
Предыдущая << 1 .. 30 31 32 33 34 35 < 36 > 37 38 39 40 41 42 .. 637 >> Следующая

Реклама

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed

Есть, чем поделиться? Отправьте
материал
нам
Авторские права © 2009 BooksShare.
Все права защищены.
Rambler's Top100

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed