Инфекционные болезни национальное руководство - Венгеров Ю.Я.
ISBN 978-5-9704-1000-4
Скачать (прямая ссылка):
Серозный вирусный менингит Прозрачная Бесцветная 20-2000 0-10 0,03-1,5 2,5-4,0 1,5-3,5 200-300 Отсутствуют
(2 сут и позже) опалесцирую-
щая
Вирусный энцефалит Прозрачная Бесцветная, 10-100 0-80 0,6-3,0 1,8-4,5 Нет данных 150-250 J 0-20
ксантохромная
Туберкулёзный менингит(начало) Прозрачная Бесцветная 50-100 40-80 0,3-1,2 2,0-3,0 2,0-4,0 200-300 Отсутствуют
Туберкулёзный менингит (разгар) Опалесци- Бесцветная, 50-200 10-20 0,6-3,0 0,5-1,2 3,0-4,0 300-500 Отсутствуют, еди
рующая, про слабоксанто- ничные
зрачная хромная
Субарахноидальное кровоизлия Мутная Кровянистая 10-100 20-60 0,6-6,0 2,5-4,5 1,2-2,5 200-400 Сплошь покрывают
ние (до суток) поле зрения
Субарахноидальное кровоизлия Мутная, про Красная («лако 50-200 40-60 1,2-6,0 2,5-3,5 1,5-3,0 200-400 50-200
ние (через сутки и позже) зрачная вая кровь»),
ксантохромная
ЛАБОРАТОРНЫЕ МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ
64 МЕТОДЫ ДИАГНОСТИКИ
Для приготовления «тонкого мазка» делают отпечаток капли крови вблизи края предметного стекла, затем ребром под углом 45° подводят к капле шлифованное стекло. После растекания крови вдоль его края непрерывным движением распределяют кровь вдоль поверхности предметного стекла. Полученный препарат фиксируют и окрашивают.
СМЖ для микроскопического исследования после ЛП помещают в стерильную пробирку. Для приготовления препарата используют осадок, образующийся спонтанно или в результате центрифугирования.
Мазки со слизистой оболочки ротовой полости и глотки берут стерильным ватным тампоном натощак или через 2 ч после еды, предпочтительно из наиболее поражённых участков, готовят мазок-отпечаток на предметном стекле. Плёнки (при наличии) снимают стерильным пинцетом. Материал из носовой полости забирают сухим тампоном, вводимым в глубь полости носа. Мазок из носоглотки берут изогнутым вверх тампоном, вводя его через рот за нёбную занавеску. Для проведения анализа на дифтерию исследуют одновременно плёнки и слизь из носа и глотки. Материал из носа и глотки берут разными тампонами.
Мочу для микроскопического исследования собирают в стерильную посуду после тщательного туалета наружных половых органов. Для приготовления препарата используют осадок мочи.
Микроскопическое исследование кала применяют для обнаружения простейших (Entamoeba histolytica, Balantidium coli, криптоспоридии и др.), яиц и личинок гельминтов. Для широкого применения в практике рекомендован метод Като, основанный на обнаружении яиц гельминтов в просветлённом глицерином и подкрашенном малахитовой зеленью толстом мазке фекалий.
Микроскопическому исследованию подвергают нативные (нефиксированные и неокрашенные) и окрашенные препараты. В первом случае выявляют живые микроорганизмы в препарате «висячая капля» или «раздавленная капля», оценивают подвижность и морфологические свойства возбудителя. Например, темно-польную микроскопию нативных препаратов используют в диагностике спирохе-тозов (первичного сифилиса, лептоспироза, эпидемического вшиного возвратного тифа), кандидоза или иных грибковых заболеваний. В этих случаях результат микроскопического исследования даёт основание для постановки диагноза.
Наиболее широко применяют микроскопию микроорганизмов в окрашенном состоянии, например, для диагностики протозойных болезней (малярии, амёбиаза, лямблиоза, лейшманиозов, трипаносомозов). Для окраски препаратов применяют ориентировочные, специальные и дифференцирующие методы. Ориентировочная окраска позволяет оценить общую морфологию микроорганизма. С этой целью применяют стандартные красители — фуксин или метиленовый синий.
Среди специальных методов обычно используют окраску по Граму. Этот метод выявляет способность бактерий удерживать краситель кристаллический фиолетовый (генциановый фиолетовый) или обесцвечиваться в спирте. Грамположительные бактерии окрашиваются в фиолетовый цвет, а грамотрица-тельные — в красный, так как они обесцвечиваются в спирте и их дополнительно окрашивают фуксином. Окраска возбудителей по Граму помогает определить первичный выбор средств антибактериальной терапии.
