Оксредметрия - Захарьевский М.С.
Скачать (прямая ссылка):
фильные целлюлозные бактерии развиваются при гн=15— 17,5 [19]. Определенная величина окислительного потенциала і ребуется и для начала роста галофилов [20].
Обычно начальное размножение бактерий связано с падением окислительного потенциала [21], причем наиболее быстрое падение его совпадает с лагфазой роста, т. е. с начальным периодом задержки роста, предшествующим логарифмической фазе роста. Согласно предположению И. Л. Pa-ботновой [4], лагфаза роста — это период, необходимый для установления величин окислительного потенциала, благоприятных для размножения микрофлоры. Длительность лаг-фазы у гнилостных анаэробов в значительной степени определяется окислительно-восстановительными свойствами среды. Чем больше посевного материала, тем меньше лагфаза. При посеве более старой культурой длительность лагфазы сокращается. Добавление гидросульфита почти полностью уничтожает лагфазу. При добавлении в культуру окислителя (тионина) величина /? забуферивается на значении ~16, и лагфаза затягивается на много часов. Экспериментально эти выводы подтверждены И. Л. Работновой [4] при изучении анаэробов Cl. sporogen.es и ацетоно-бутиловых бактерий. Для начального роста морских сульфатредуцирующих бактерий необходим окислительный потенциал <200 мв, причем чем ниже потенциал, тем короче лагфаза и тем скорее возникает биогенная редукция, приводящая к снижению окислительного потенциала до —200 мв [22].
В периоде лагфазы микроорганизмы сами создают необходимую для их развития величину окислительного потенциала. Бактериальные культуры почти всегда являются резко редуцирующими системами [23]. В особенности это относится к анаэробам, создающим соответствующие окислительно-восстановительные условия в среде. Согласно Хыоитту [23] бактерии производят редукцию на поверхности клетки. Микроорганизмы являются активными центрами каталитических химических реакций, вызываемых энзимами на поверхности клетки. Вместе с тем центрифугированный, лишенный клеток, экстракт содержит восстановители, которые легко окисляются воздухом [11] и возможно являются веществами типа альдегидов [24]. Хотя о природе редуцирующих веществ, выделяемых анаэробами, почти ничего неизвестно [4], по нашему мнению, они не могут быть идентичны в различных бактериальных культурах.
Нами было показано в 1939 г. [2R], что минимальная величина потенциала, достигаемая в одной и той же культурен при одной и той же численности микроорганизма, но на разных по составу средах, может варьировать в значительных пределах. Такое явление не наблюдалось бы, если бы различные
/
среды отличались только концентрацией одних и тех же восстановителей. В пользу качественного отличия восстановителей говорят значения минимальных величин потенциала у различных культур, выращиваемых на одной и той же среде. Так, если Гц в культурах Вас. coli или Вас. proteus vulgaris доходит почти до 0 [25], то при развитии пивной сарцины гн снижается до 9—14 [26]. Под пленкой мицеллия Act. globisporus Гц длительное время сохраняется равным 15—17 [4], а на синтетической среде с сахаром аэроб Rizopus nigricans снижает гн до 10, Rizopus X — до гн = 5—6 [27].
Прекращение жизнедеятельности микроорганизмов связано с окислением редуцирующих веществ и подъемом потенциала, тогда как разрыв или растворение клеток, приводящее к усиленному поступлению в среду восстановителей, вызывает падение потенциала.
А. В. Рыбалкина [28] обнаружила в растущей культуре Azotobacter chroococcum кривую с двумя минимумами потен-- циала. Первый из них связан с активным размножением культуры, тогда как второй объясняется разрывом клеток и поступлением в окружающую их среду клеточного содержимого. 3. В. Ермольевой [29] установлено, что фаголизис культуры Вас. coli и дизентерийной культуры Шига сопровождается резким повышением потенциала, доходящим до значений потенциала стерильного бульона. В поверхностных культурах Streptomyces griseus, зараженных фагом, наблюдалась задержка снижения окислительного потенциала и даже повышение его [30]. Авторы объясняют это явление разрушением пленки мицеллия и диффузией кислорода в среду. Согласно Хьюитту [31], добавление бактериофага к аэрированной бульонной культуре дизентерийных бактерий Шига до размножения ее вызывало отсутствие падения окислительного потенциала и роста, добавление фага к культуре после ее размножения — некоторое падение потенциала. Введение фага в аэробную глюкозную культуру колибактерий вызывало падение потенциала даже при отсутствии видимого роста, затем подъем потенциала и вторичное падение, связанное с заметным ростом. Аналогичная картина наблюдалась Хыоиттом и в случае золотистого стафилококка.
Таким образом, согласно литературным данным, добавление бактериофага может как повышать величину окислительного потенциала среды за счет прекращения жизнедеятельности микроорганизмов, так и понижать ее из-за лизиса культуры. Величина, потенциала в случае фаголизиса существенным образом зависит от концентрации микроорганизмов, подвергающихся лизису.
По нашим данным [32], уменьшение численности микроорганизмов культуры золотистого стафилококка за счет фаго-
