Методы культивирования клеток - Вахтин Ю.Б.
Скачать (прямая ссылка):
-1) приготовить растворы: 1а) 0.5 М Трис-НС1, 0.05 М MgCU (1.0 мл 1 М Трис-НС1, pH 7.6, 0.1 мл 1 М MgCl2, 0.9 мл НгО);
16) 5 • 10~3М 5-фосфорибозилпирофосфат (сухой порошок хранить при —20 °С; 4.05 мг растворить в 2 мл НгО); 1в) 1 С-гипоксантин
стерилизуют фильтрованием. Дифтерийный токсин получают в ампулах в виде стерильного раствора. Фильтровать дифтерийный токсин не следует, так как после фильтрации он теряет свою активность. Приготовленные растворы можно хранить замороженными (—20 °С) или при 4 °С, за исключением растворов уабаина и дифтерийного токсина, которые хранят только при 4 °С. Концентрированные растворы ядов при соблюдении условий хранения практически не теряют своей активности на протяжении 3—4 мес.
Литература '
1. Siminovitch L. On the nature of hereditable variation in cultured somatic cells// Cell. 1976. Vol. 7. P. 1 — 17.
2. Baker R. Af., Ling V. Membrane mutants of mammalian cells in culture// Methods in membrane biology. New York, 1978. Vol. 9. P. 337—384.
3. В'/right J. A., Lewis W. H., Parfett C. L. ]. Somatic cell genetics: A review of drug resistance, lectine resistance and gene transfer in mammalian cells in culture // Canad. J. Genet. Cytol. 1980. Vol. 22. P. 443—496.
4. O’Neill P. J., Brimer P. A., Machanoff R. et al. A quantitative assay of mutation induction at the hypoxantineguanine phosphoribosyl transferase locus in Chinese hamster ovary cells (CHO/HGPRT system): Development and definition of the system//Mutat. Res. 1977. Vol. 45. P. 91 — 101.
5. Jacobs L., De Mars R. Quantification of chemical mutagenesis in diploid human fibroblasts: induction of azaguanine-resistant mutants by N-methyl-N-nitro-N-nitros(^juanidine // Mutat. Res. 1978. Vol. 53. P. 29—53.
6. Szybalski W. Resistance to 8-azaguanine, a selective marker for human cell line // Microbiol. Genet. Bull. 1958. Vol. 16. P. 30.
7. Sharp J. D., Capecchi N. W., Capecchi Af. R. Altered enzymes in drug resistant variants of mammalian tissue culture cells//Proc. Nat. Acad. Sci. USA. 1973. Vol. 70t*P. 3145—3149.
8. Shin S. Nature of mutations conferring resistance to 8-azaguanine in mouse
cell lines //J. Cell Sci. 1974. Vol. 14. P. 235—251.
9. Maher V. М., Wessel ]. E. Mutation to azaguanine resistance induced in cultured
diploid human fibroblasts by the cancerogen N-acetoxy-2-acetylaminofluorene // Mutat. Res. 1975. Vol. 28. P. 277—284.
10. Fox М., Radacic M. Adaptational origin of some purine-analogue resistant phenotypes in cultured mammalian cells// Mutat. Res. 1978. Vol. 49. P. 275—296.
11. Bradley М. O., Bhuyan B., Francis М. C. et al. Mutagenesis by chemical agents in V79 Chinese hamster cells: A review and analysis of the literature. A report of the genetix programm // Mutat. Res. 1981. Vol. 87. P. 81 —142.
12. Turner N. Т., Batson G. A., Clive D. Procedures for the L5178y/TK+I TK_I-mouse lymphoma cell mutagenecity assay // Handbook of mutagenecity test procedures / Eds. B. J. Kibey et al. Amsterdam. 1984. P. 239—268.
13. Rappoport H., De Mars R. Diamino purine-resistant mutants of cultured diploid
human fibroblasts // Genetics (USA), 1973. Vol. 75. P. 335—345.
14. Jones G. E., Sargent P. A. Mutants of cultured Chinese hamster cells deficient in
adenine phosphoribosyltransferase//Cell. 1974. Vol. 2. P. 37—41.
15. Chan T. S., Ish K-, Long C., Green H. Purine excretion by mammalian cells deficient in adenosine kinase//Cell. Physiol. 1973. Vol. 81. P. 315— 322.
16. Clive D., Flamm W. G., Machesko M. R.. Bernhein N. I. A mutational assay system using the thymidine kinase locus in cultured L 5178y mouse lymphoma cells//Mutat. Res. 1972. Vol. 16. P. 77—87.
17. Kit S., Leung W. C., Trkula D. Properties of mitochondrial thymidine kinases of parential and enzyme-deficient HeLa cells//Europ. J. Biochem. 1973. Vol. 39. P. 43—48.
18. Wigler М., Sweet R., Sim G. K. et al. Transformation of mammalian cell with genes from procaryotes and eucaryotes // Cell. 1979. Vol. 16. P. 777—785.
19. Plagemann P. G. W., Marz R., Wohlhueter R. M. Uridine transport in Novikoff rat hepatoma cells and other cell lines and its relationship to uridine phosphorylation and phosphorolysis //J. Cell. Physiol. 1978. Vol. 97. P. 49—72.
20. Ultman B., Levinson В. B., Ullman D. H., Martin D. W. Isolation and characterization of cultured mouse-T-lymphoma cells deficient in uridine-cytidine kinase // J. Biol. Chem. 1979. Vol. 254. P. 8736—8739.
21. Levinson В. B., Ultman B., Martin D. W. Pyrimidine pathway variants of cultured mouse lymphoma cells with altered levels of both orotate phosphoribosyltransferase and orotidylate decarboxylase//J. Biol. Chem. 1979. Vol. 254. P. 4396—4401.
22. Flintoff W. F., Davidson S. V., Siminovitch L. Isolation and partial characterization of three methotrexate-resistant phenotypes from Chinese hamster ovary cells // Somat. Cell Genet. 1976. Vol. 2. P. 245.
23. Dolnik В. /., Berenson R. /., Bertino I. R. et al. Correlation of dihydrofolate reductase elevation with gene amplification in homogeneously staining chromosomal region of L 5l78y cells // J. Cell Biol. 1979. Vol. 83. P. 394—402.
