Молекулярная биология клетки - Уилсон Дж.
ISBN 5-03-001999-5
Скачать (прямая ссылка):
много энергии.
Это очень привлекательная гипотеза для объяснения регуляции
синтеза RF2, одцако прямых данных в ее пользу или против нее нет.
Литература: Craigen, W. JCook, R.G.; Tate, W. P.; Caskey, С. T.
Bacterial peptide chain release factors: conserved primary structure and
possible frameshift regulation of release factor 2. Proc. Natl. Acad.
Sci. USA 82, 3616-3620, 1985.
Jacks, Т.; Varmus, H. Expression of the Rous sarcoma virus pol gene
by ribosomal frameshifting. Science 230, 1237-1242, 1985.
-9
A. Поскольку бактерии инкубировали в присутствии метки на протяжении
времени одной генерации, которая означает удвоение массы, то 4 мкг из 8
мкг флагеллина, выделенного из геля, были синтезированы в присутствии
358-цистеина. Величина радиоактивности образца показывает, что меченый
цистеин содержится в одной из 1670 молекул флагеллина (фгл).
Cys 300 имп/мин Cys пмоль Cys 4 х 104 мкг фгл
____ = ________________ у/ _______________ ^________________
фгл 4 мкг фгл 5 х 103 имп/мин мкмоль фгл мкмоль 6 X 10"2 пмоль Cys
X --7------- = ------------------- ,
10° пмоль 100 пмоль фгл
Й2,бхЮ-\
фгл
что равно одной молекуле цистеина на 1670 молекул флагеллина (1/6 х
Ю"4).
Б. Нормальные кодоны для цистеина-это UGU и UGC. Таким образом, ошибка
при взаимодействии кодон-антикодон относится к первому положению кодона
(третьему положению антикодона). Результаты этого и других экспериментов
позволяют предполагать, что рибосомы могут ошибочно считывать U вместо С
и С вместо U в первых двух положениях кодонов, а С и U-вместо А в первом
положении.
B. Предполагая, что все шесть аргининовых кодонов равновероятны,
получим, что в молекуле флагеллина должно быть шесть чувствительных
аргининовых (CGC и CGU) кодонов (2/6 х 18). Следовательно, истинная
частота ошибок для одного "кодона с риском" составляет
1 Число молекул фгл
Частота ошибок =---------------------х----------------------
1670 молекул фгл 6 чувствит. кодонов
частота ошибок = 10' 4.
Г. Если вероятность сделать ошибку в каждом кодоне равна 10~4, то
вероятность не сделать ошибку в каждом кодоне равна (1-10-4). Тогда
вероятность не совершить ошибку в и-кодонах будет (1-10~4)п. Таким
образом, доля правильно синтезированных молекул длиной 100 аминокислот
составит (1-10-4)100, или 99%. Для белка из 1000 аминокислот эта доля
равна 90%. В случае молекул, состоящих из 10000 аминокислот, будет
правильно синтезироваться только 37% молекул. Не удивительно поэтому, что
Основные генетические механизмы 287
белки с количеством аминокислот свыше 3000 встречаются очень редко.
Литература: Edelman, P.; Gallant, J. Mistranslation in Е. coli.
Cell 10, 131-137, 1977.
5-10
A. Эдеин специфически ингибирует инициацию синтеза белка, препятствуя
соединению бОБ-субъединицы рибосомы с комплексом "408-
субъединица/мРНК/инициаторная тРНК". Поскольку элонгация при этом не
блокируется, то рибосомы, которые уже начали синтез, завершают построение
своих индивидуальных полипептид-ных цепей и покидают мРНК, так что
присоединенными к этой нуклеиновой кислоте остаются только малая
субъединица рибосомы и инициаторная тРНК.
Эдеин-это антибиотик, выделяемый некоторыми штаммами Bacillus
brevis.
Б. Причина того, что синтез белка прекращается не сразу, а после
некоторой задержки, связана с механизмом действия эдеина. Он ингибирует
инициацию, не затрагивая реакций элонгации в синтезе белка. Таким
образом, ничто не мешает рибосоме, которая только что начала
синтезировать новый полипептид, довести синтез до конца. Включение метки
продолжается в течение всего периода образования исследуемого белка (в
данном случае, глобиновых цепей гемоглобина), т. е. около 1 мин.
B. Если циклогексимид (или любой другой ингибитор элонгации) добавляют
одновременно с ингибитором инициации, полирибосомы как бы "замирают". Для
того чтобы полирибосомы повреждались ингибиторами инициации, должно
осуществляться продвижение рибосом, а оно блокируется ингибиторами
элонгации.
Литература: Safer, ВKemper, W.; Jagus, R. Identification of a 48S
preinitiation complex in reticulocyte lysate. J. Biol. Chem. 253, 3384-
3386, 1978.
Механизмы репарации ДНК
5-11
A. репарация ДНК; мутация
Б. фибринопептиды
B. апуринизация; дезаминирование
Г. ДНК-репарирующие нуклеазы; ДНК-полимераза; ДНК-лигаза
Д. АП-эндонуклеаза
Е. ДНК-гликозилаза
Ж. крупные повреждения
3. SOS-ответ
5-12
A. Правильно.
Б. Правильно.
B. Неправильно. Нуклеотидные последовательности генов гистона Н4 у
разных видов значительно варьируют, однако изменения связаны по большей
части с заменой нуклеотидов в третьем положении кодонов, так что гены
кодируют одну и ту же аминокислотную последовательность.
Г. Правильно.
Д. Неправильно. Репарация зависит от наличия двух копий генетической
