Биосенсоры: основы и приложения - Тёрнер Э.
Скачать (прямая ссылка):
Ions (eds. С. C. Ashley, A. K. Campbell), p. 227. Elsevier - North
Holland, Amsterdam, 1979.
42. Richardson A. P. Hovel chemiluminescence immunoassays. Ph. D. Thesis,
University of Sussex, England, 1985.
43. Roda A., Girotta S., Ghini S.. Grigola B., Carrea G., Bovara.
Development of a continuous-flow analysis for serum and salivary bile
acids using bacterial bioluminescent enzymes immobilized on nylon coil.
In Clinical and biochemical luminescence (eds. L.J. Kricka, T.J.N.
Carter), p. 129. Dekker, New York, 1984.
44. Roswell D. F., White E. H. Chemiluminescence of luminol and related
hydrazides. In Methods in enzymology, 57 (ed. M. Deluca), p. 409.
Academic Press, New York, 1978.
45. Salerno R., Moneti G.. Magini A., Tomasi A.. Pazzagli M. Evaluation
of luminescent immunoassay methods for urinary steroids. In Analytical
applications of bioluminescence and chemiluminescence (eds. L.J. Kricka,
P. E. Stanley, G.H.G. Thorpe, T. P. Whitehead), p. 179. Academic Press,
London, 1984.
46. Schroeder H.R., Boguslaski R.C., Carrico R.J., Buckler R.T.
Monitoring specific protein binding reactions with chemiluminescence. In
Methods in enzymology 57 (ed. M. DeLuca), pp. 424-45. Academic Press, New
York, 1978.
47. Schuster G. B. Chemiluminescence of organic compounds: conversion of
ground state reagents to excited stade products by the CIEEL mechanism.
Acct. Chem. Res., 12, 366-73 (1979).
48. Seliger H. H., McElroy W. D. Pathways of energy transfer in
bioluminescence. Radiation Res. Suppl. 2, 528 -38 (1960).
49. Stanley P. E. Instrumentation. In Clinical and biochemical
luminescence (eds. L. J. Kricka, T.J.N. Carter), pp. 219-260. Dekker, New
York, 1982.
50. Strehler B.L. Bioluminescence assay: principles and practice. Methods
Biochem. Anal. 16, 99' 181 (1968).
51. Tseng S., Rauhut M.M. Europ. Pat. Appl. No. 811 003 69.8, 1981.
52. Tsuji F. I. Cypridina luciferin and luciferase. In Methods in
Enzymology 57 (ed. M. DeLuca), pp. 364-72. Academic Press, New York,
1978.
53. Ward W. W., Cormier M. J. An Energy transfer protein in coelenterate
bioluminescence. J. Biol. Chem., 254, 781-88 (1979).
504
Глава 31
54. Weeks I., Campbell A. K., Woodhead J. S. Two-site
immunochemiluminometric assay for human alpha-fetoprotein. Chin. Chem.,
29, 1480-3 (1983).
55. Weeks I., Beheshti I., McCapra F , Campbell A.K., Woodhead J.S.
Acridinium esters as high specific activity labels in immunoassay. Chin.
Chem., 29, 1474-9 (1983).
56. Weeks I., Sturgess M" Siddle K., Jones М. K" Woodhead J. S. A High
sensitivity immunochemiluminometric assay for human thyrotropin. Chin.
Endocrinol., 20, 489-95 (1984).
57. White E.H., Miano J.D., Umbreit M. On the mechanism of firefly
luciferin luminescence. J. Am. Chem. Soc., 97, 198-200 (1975).
58. Wilson T. Chemiluminescence in the liquid phase. Int. Sci. Rev., 9.
265-322 (1976).
59. Wienhausen G. K., Kricka L. J., Hinckley J. E., DeLuca M. Properties
of bacterial Luciferase/NADH-FMN oxidoreductase and firefly luciferase
immobilised onto sepharose. Appl. Biochem. Biotech., 7, 463-72 (1982).
60. Wynberg H., Meijer E. W, Hummelen J. C. 1.2-Dioxetanes as
chemiluminescent probes and labels. In Bioluminescence and
chemiluminescence (eds. M. DeLuca, W.D. McElroy), pp. 687-9. Academic
Press, New York, 1981.
Глава 32
Конструирование волоконно-оптических биосенсоров на основе биорецепторов
Джером С. Шульц
32Л. Введение
В последние годы важную роль стали играть разнообразные оптические
волокна и оптоэлектронные устройства (как источники света, так и
детекторы). Особый интерес к оптическим волокнам обусловлен тем, что они
позволяют миниатюризовать спектрофотометрические приборы до такой
степени, что становится возможным использовать пробы объемом порядка 0,1
мкл [2]. Оптические волокна уже используют в микроколориметрах и
микрофлуориметрах [28]. Однако лишь недавно волоконную оптику стали
сопрягать с биохимическими реакциями с целью создания миниатюрных
биосенсоров.
Показано, что аналитические волоконно-оптические приборы можно
использовать для контроля различных физических параметров, например
температуры, определения pH и простых веществ типа С02 и 02 [12, 16, 18].
Из недавних обзоров, посвященных разработке оптических биосенсоров, можно
отметить работы [21] (см. гл. 30) и [17].
Авторы [20] предложили способ определения биологически активных веществ
на основе конкурентного связывания этих веществ и их аналогов с
флуоресцирующей меткой со специфическими рецепторами. В миниатюризованном
варианте этой системы "пробиркой" является полое диализное волокно, в
которое вставлено оптическое волокно, служащее для контроля
спектроскопических изменений. Важная особенность метода заключается в
том, что он является безреагентным. Используемые в системе реакции
обратимы, а реагенты представляют собой высокомолекулярные соединения,
удерживаемые в реакционной зоне диализной мембраной. Таким образом,
