Научная литература
booksshare.net -> Добавить материал -> Биология -> Лурия Е.А. -> "Кроветворная и лимфоидная ткань" -> 37

Кроветворная и лимфоидная ткань - Лурия Е.А.

Лурия Е.А. Кроветворная и лимфоидная ткань — М.: Медицина, 1972. — 158 c.
Скачать (прямая ссылка): krovetvornayailimftkan1972.djvu
Предыдущая << 1 .. 31 32 33 34 35 36 < 37 > 38 39 40 41 42 43 .. 68 >> Следующая

В последующие сроки происходит активный фагоцитоз и переваривание детрита. На освобожденной от детрита строме в периферических участках эксплантата сохраняются и постепенно увеличиваются в размере небольшие скопления малых и средних лимфоцитов, а также группы крупных пиронинофнльных клеток типа лимфобластов, многие из которых делятся. Малые лимфоциты местами плотно заполняют лимфатические сосуды эксплантатов (рис. 28) Связь тучных клеток с очагами пролиферации лимфоцитов проявляется на этой стадии очень отчетливо.
Фильтр также очищается от детрита. На нем наблюдаются картины интенсивной пролиферации стромы: разрастание клеточных тяжей и пластов. Выселение лимфоидных элементов в зону роста прекращается. На 4 5-е сутки в
эксплантатах тимуса часто встречаются мелкие очажки мне* лоидного кроветворения
Регенерация лимфоцитов на периферии эксплантатов ириводт к формированию небольших фолликулов, четко выступающих на фоне опустошенной стромы. В состав фолликула входят лимфоидные элементы различной степени зрелости и клетки в состоянии митоза.
Рис 27. Р.ирасташк* стромы п 5-лнгвной органной культуре
тимуса.
В последующие сроки(10—12 дней) размер фолликулов увеличивается п лимфоидная ткань заполняет уплощенный эксплантат. Ирм этом тимус оказывается состоящим ие из корковой и мозговой юны, а из отдельных округлых фолликулов (рис. 29). часто имеющих просветленные центры. На фильтре продолжается интенсивное разрастание стромы. Край зоны роста представлен фнбробластоподобными клетками, образующими травовидные выросты. Однако распространения лимфоидной ткани за пределы кусочка не происходит: в зоне роста, непосредственно вблизи от эксплантата, встречаются лишь отдельные лимфоциты.
На активную пролиферацию лимфоцитов в органных культурах указывают не только наличие митозов в лимфоидных клетках, но и данные по включению Н3-тимндина (рис. 30). При введении Н3-тимиднна в питательную среду 10-дневных культур тимуса мышиных эмбрионов на срок от 1 до 72 часов удалось показать, что пролиферативный пул для больших и средних лимфоцитов превышает 50%. При одночасовой метке происходит включение тимидина в 3,5— •”>% больших и средних лимфоцитов; все малые лимфоциты остаются немечеными. Первые меченые малые лимфоциты появляются через 7 часов после введения Н3-тнмндина. Полученные результаты указывают, что в условиях органных культур к пролиферации способны те же категории лимфоцитов, что и в организме, а время дифференцировкн от
Рис. 28. о,б. Скопление лимфоцитов в просвете лимфатических сосудов в 5-дневных органных культурах тимуса.
большого — среднего лимфоцита до малого составляет около 7 часов.
В целом сходные результаты получаются и при эксплантации фрагментов тимуса молодых морских свинок. В первый период происходит массовая миграция и гибель лимфоидных элементов с сохранением лишь небольшого количества их в периферических участках эксплантата. Впоследствии наблюдается очищение стромы от детрита, разраста-
Рис. ijy. Вторичный фолликул н 11-дневной органной культуре тн муса новорожденной мыши.
Рнс. 30. Включение f Р-тимндина в большие лимфоциты в 10-днев-ной органной культуре тимуса.
ние се по фильтру и регенерация лимфоидной ткани п самом эксплантате. Интересно отметить, что в культурах тимуса морских свинок образуются эпителиальные структуры типа телец Гассаля. Образующие их клетки активно пролиферируют, на что указывает интенсивное включение Н3-тимиди* на. Компактные скопления лимфоцитов, ассоциированные с клетками стромы, сохраняются в течение длительного времени (30 дней).
Культивирование кусочков тимуса морской свинки мы проводили на той же питательной среде, что и тимус мышей, однако миллипорные фильтры отличались по рнд\ харак-
НА AUFS RfiWC
Рис. 31. Тип роста клеток в зависимости от структуры и морозности фильтров.
теристик. В первом случае использовались фильтры НА, имеющие размер пор. равный 0,45 мк, во втором—фильтры RAWG с размером пор 1.2 мк и фильтры AUFS с размером пор 0,6 0,9 мк. Фильтры НА непроницаемы для клеток, а через фильтры ALTS и RAWG клетки свободно проходят. Кроме того, эти тины фильтров отличаются, вероятно, и свойствами поверхности, что имеет большое значение для ткани (рис. 31). Как будет видно из дальнейшего изложения, для длительного культивирования лимфоидных органов целесообразно использовать миллипорные фильтры, имеющие относительно большой размер пор.
При культивировании целых лимфатических узлов мыши и морской свинки на миллипорных фильтрах НА и AUFS (размер пор 0,6—0,9 мк) в ранние сроки (2 4 дня) в цент-
ре эксплантата происходят тотальная деструкция лимфоцитов и сохранение отдельных элементов стромы. На периферии эксплантата сохраняются небольшие группы живых лимфоцитов. Иногда скопления лимфоцитов лежат непосредственно под капсулой в расширенных синусах и просвете лимфатических сосудов (рис. 32). Здесь же обиаружива-
Лимфатические узлы
Предыдущая << 1 .. 31 32 33 34 35 36 < 37 > 38 39 40 41 42 43 .. 68 >> Следующая

Реклама

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed

Есть, чем поделиться? Отправьте
материал
нам
Авторские права © 2009 BooksShare.
Все права защищены.
Rambler's Top100

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed