Научная литература
booksshare.net -> Добавить материал -> Биология -> Лопатин В.Н. -> "Методы светорассеяния в анализе дисперсных биологических сред" -> 75

Методы светорассеяния в анализе дисперсных биологических сред - Лопатин В.Н.

Лопатин В.Н., Приезжаев А.В., Апонасенко А.Д. Методы светорассеяния в анализе дисперсных биологических сред — М.: ФИЗМАТЛИТ, 2004. — 384 c.
ISBN 5-9221-0547-7
Скачать (прямая ссылка): metodisvertosiyaniya2004.djvu
Предыдущая << 1 .. 69 70 71 72 73 74 < 75 > 76 77 78 79 80 81 .. 154 >> Следующая

t, мин
Рис. 2.5. Кинетика переменной составляющей флуоресценции зелёных водорослей. Возбуждающее излучение — 400-480 нм, интенсивность ^60 Вт/м2. Моменты включения света и добавления симазина указаны стрелками
По современным представлениям [187] схему фотосинтетической цепи переноса электрона зелёных растений можно изобразить в виде
НоО-
-+ П680 -
Т
Свет II
* П700
т
Свет I
НДДФ,
(2.37)
где П680 и П700 — молекулы — первичные доноры электрона фотосистем II (ФСП) и I (ФС1), Z — донор электронов к ФСП; Q, X — первичные акцепторы электронов ФСП и ФС1, Пх — пластохинон, Фд — ферредоксин, Свет I и Свет II — свет, поглощаемый преимущественно
ФС1 и ФСП.
Для индукционных кривых флуоресценции нативного хлорофилла растений различаются следующие участки, для которых приняты специальные обозначения (рис. 2.5) [187]: сразу после включения возбуждающего света (на рисунке отмечено стрелкой) в течение десятков миллисекунд наблюдается быстрый рост интенсивности флуоресценции 1ф (участок О-I), отражающий фотохимическое восстановление продукта Q; затем рост 1ф замедляется (I-D), что связывают с начавшимся оттоком электронов от Q~ к ФС1, при этом пул электронных ёмкостей ФС1 быстро заполняется, что приводит к дальнейшему росту 1ф до максимальных значений 1м (D-Р). Изменения 1ф на стадиях О-I-D-P (быстрая фаза, секундный диапазон), соответствующие фото-физическим процессам — функционированию электрон-транспортной цепи, происходят за одну или несколько секунд. После достижения 1М (точка Р) начинается относительно медленное снижение 1ф (стадия Р-S), обусловленное активацией терминального фермента электрон-транспортной цепи Фд: НАДФ+-редуктазы ферментов цикла Кальвина. За спадом 1ф на стадии Р-S может наблюдаться небольшое вырастание (S-М) до уровня М с последующим снижением до стационарного уровня 1ст. Заметим, что для интенсивно растущих водо-
рослей, молодых листьев растений наблюдается монотонный спад 1ф, как показано на рис. 2.5 пунктирной линией РМ. Механизм, природа, немонотонный характер изменений 1ф на стадиях PSMT (медленная фаза) остаются неясными. Ряд исследователей эти изменения объясняют перераспределением энергии поглощённых квантов между фотосистемами ФСП и ФС1 в пользу последней, окислением продукта Q~ за счёт активации реакций углеродного цикла (цикла Кальвина). При добавлении разобщителей электрон-транспортной цепи, например, гербицида монурона (диурона, симазина и др.), наблюдается резкое возрастание интенсивности флуоресценции до уровня 1сим.
Индукционные кривые флуоресценции хлорофилла качественно отражают состояние фотосинтетического аппарата и являются показателем активности протекающих первичных процессов фотосинтеза. Интенсивность флуоресценции водорослей (а также и высших растений) может изменяться в диапазоне 1м ^ 1ф ^ 1ст (рис. 2.5). Экспериментальные исследования показывают, что разность (1м — 1ст), отношения к = (/„ - /„)//„, К = (/сим - /ст)//сим, п = 1„/1„ И др. существенно зависят от активности фотосинтетического аппарата, условий облучения растений (погодных и суточных колебаний уровня облучённости).
Из анализа данных, приведённых в работах [186-193], можно сделать вывод: при определении концентрации хлорофилла фитопланктона флуоресцентным методом необходимо, в первую очередь, учитывать условия облучения водорослей: уровни облучённости, время темновой адаптации, интенсивность возбуждающего света и др. [194].
Устранить влияние изменений видового состава возможно, если использовать усложнённый вариант измерений, предложенный в работе [195], при котором к тому же можно определять и состав фитопланктона по трём основным отделам водорослей.
2.4.2. Оценка содержании растворённого органического вещества флуоресцентным методом. Другим применением флуоресценции является возможность оперативного обнаружения и оценки содержания флуоресцирующей фракции растворённого органического вещества. Среди физических характеристик флуоресценции РОВ лучше всего изучено её спектральное распределение. Форма спектра флуоресценции мало изменяется, если спектральный состав возбуждающего излучения постоянен. Напротив, изменения последнего сильно влияют на положение максимума и форму полосы свечения РОВ [97]. Её максимум сдвинут относительно линии возбуждения на 80-100 нм в сторону больших длин волн. В этом заключается отличие флуоресценции РОВ от флуоресценции растворов, у которых положение и форма полосы свечения не зависят от спектрального состава возбуждающего излучения.
Измерение интенсивности флуоресценции и общего содержания РОВ на различных водоёмах показывает наличие между ними связи средней силы (г = 0.57; количество проб — 72) [196]. При этом
отношение К\ = 1ф ров/Сров изменяется более чем на порядок. Это, по-видимому, связано с тем, что флуоресцирующие ОВ составляют лишь часть РОВ и имеют различный компонентный состав. Изучение изменений интенсивности флуоресценции растворённого органического вещества совместно с гидрооптическими характеристиками позволяет получить дополнительные данные, дающие возможность судить о качественном изменении состава и свойств РОВ на исследованной акватории. Оценить изменения состава и свойств РОВ можно по параметрам: коэффициент (.L, удельный показатель поглощения, относительный энергетический выход флуоресценции для общего РОВ и его флуоресцирующей фракции (Во ров и Вф ров) и относительная удельная флуоресценция (Р0 ров и Рф ров) соответственно:
Предыдущая << 1 .. 69 70 71 72 73 74 < 75 > 76 77 78 79 80 81 .. 154 >> Следующая

Реклама

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed

Есть, чем поделиться? Отправьте
материал
нам
Авторские права © 2009 BooksShare.
Все права защищены.
Rambler's Top100

c1c0fc952cf0704ad12d6af2ad3bf47e03017fed