Водный обмен растений - Жолкепич В.Н.
ISBN 5-02-003977-2
Скачать (прямая ссылка):
/ — пенек; 2 — хлорсеребряиые электроды ЭВЛ для отведения биоэлектрических потенциалов; 3 — резиновая втулка; 4 — игла от шприца; 5 —две тонкие проволоки, через которые замыкается электрическая цепь падающими каплями экссудата; 6 — эбонитовый держатель для проволок; 7 — стакан для сбора экссудата; 8 — элемент «Марс-373»; 9-1 — первый канал полирекордера EPR-3T; 9-2 — второй канал полирекордера EPR-3T; 10— усилитель постоянного тока VI-2; И — крышка для крепления растения; 12 — фарфоровый стакан
с помощью длинной резиновой трубки, предварительно заполненной прокипяченной водой для предотвращения пузырьков воздуха, может быть укреплена в горизонтальном положении. В таком случае уменьшается возможность влияния водного столба на нагнетание воды корнем.
В лабораторных исследованиях последнего времени, работая с проростками, скорость экссудации все чаще определяют в средней части корня, обладающей наибольшей поглотительной способностью [329, 330], по методике, применявшейся в работах [331, 332]. Схема установки изображена на рис. 34. Корень
5—8-дневного проростка разрезают в капле воды лезвием безопасной бритвь(. на Две равные части. Нижнюю половину длиной
4—6 см вставляют в микропипетку таким образом, чтобы корень входил в нее на 2 мм. Место соединения корня с пипеткой заклеивают жидкой смесью канифоли и парафина (1 : 1), чтобы предотвратить вытекание экссудата из пипетки. Перед началом определения экссудации корни выдерживают 20 мин во влажной камере, в противном случае экссудация оказывается либо очень слабой, либо вовсе отсутствует. О движении экссудата судят по смещению мениска в микропипетке. Интенсивность экссудации выражают в мкл -см-2 -ч-1, учитывая площадь поверхности корня [273]. Для определения осмотического давления экссудат собирают при помощи микропипеток, используя одновременно 25—50 корней, из экссудата которых составляет 1—2 пробы.
И. И. Гунаром и Л. А. Паиичкиным [301] предложен простой и надежный способ автоматической регистрации экссудации, основанный на замыкании электрической цепи падающей каплей экссудата и записи этого момента на самописце (рис. 35). К пеньку декапитированного растения с помощью эластичной резиновой трубки присоединяется дугообразно изогнутая игла от медицинского шприца (1), через которую вытекает экссудат. На пути падающей в стаканчик (2) капли укрепляют в наклонном положении на эбонитовом держателе (3) два игольчатых электрода (4). Они должны быть ориентированы так, чтобы капля пасоки, попадая на них, на короткое время замыкала цепь (5), вызывая отклонение пера самописца, и скатывалась. В качестве электродов могут быть использованы проволочки из нержавеющей стали или тонкие иглы от шприца, включенные в электрическую цепь с источником постоянного тока и высокоомным самописцем. Пенек с системой для сборки пасоки и электродами во время опыта накрывают стеклянным колпаком для предотвращения испарения воды в момент образования капли и подсыхания ее на электродах.
Для расчета абсолютных величин скорости плача определяют объем капли. Для этого собирают 100 капель в маленькие градуированные пробирки и рассчитывают среднюю величину капли. Ее объем зависит главным образом от размеров полости иглы и принимается неизменным в течение опыта. Затем рассчитывают по вариантам среднее расстояние между пятью штрихами на ленте и находят время образования четырех капель пасоки. Зная скорости движения ленты самописца (обычно устанавливают 15 см-ч-1), определяют время образования одной капли и, умножив эту величину на объем, рассчитывают скорость экссудации (в мл-ч-1 или мкл-мин-1).
Выбор техники количественного сбора экссудата необходимо проводить с учетом видовых особенностей и возраста растений, мощности развития и интенсивности роста корневой системы, условий предварительного выращивания растений и опыта, а также' желательной продолжительности и периодичности наблю-
дения. В качестве ориентировочных можно использовать следующие данные: скорость экссудации травянистых растений до
2-недельного возраста измеряется десятыми долями миллилитра в час, месячных — от одного до нескольких миллилитров в час. После цветения торможение роста корневой системы приводит к затуханию экссудации. Вследствие больших индивидуальных различий растений, особенно в полевых условиях, учет экссудации необходимо проводить с большой повторностью. В вегетационном опыте для каждого варианта берут 12—15, в полевом — 20—30 растений.
Анализ экссудата желательно проводить сейчас лее после его сбора. Но если это невозможно, то в собранный экссудат добавляют 1—2 капли хлороформа и толуол слоем 1—2 мм на поверхности и хранят при температуре 1—3°.
Если сбор экссудата продолжается больше суток, то во избежание развития микроорганизмов 1 раз в сутки со стебля снимают резиновую трубку, срезают пенек на 3—5 мм, промывают поверхность стебля водой и вновь укрепляют на пеньке промытую систему для сбора экссудата. Анализируя органические вещества экссудата при длительном его сборе, необходимо пользоваться простерилизованными приемниками, а перед срезанием растений протирать руки, бритву и наружную поверхность стебля спиртом.
