Фотосинтез С3 и С4 растений механизмы и регуляция - Эдвардс Дж.
Скачать (прямая ссылка):
37. Kelly G. /., Gibbs' M. A mechanism for the indirect transfer of photosynthe-tically reduced nicotinamide adenine dinucleotide phosphate from chloro-plasls to the cytoplasm, Plant Physiol., 52, 674—676 (1973).
38. Ku M. S. B., Spalding М. II., Edwards G. E. Intracellular localization of pliosplmenulpyriivate carboxykiua.se in leaves of C4 and CAM plants, Plant Sci. Letters, 19, 1—8 (1980).
39. Lea P. }., Miflin B. J. Photosynthetic ammonia assimilation. In: Encyclopedia of Plant Physiology, New series, Vol. 6, Photosynthesis II, Photosynthetic carbon metabolism and related processes, (eds. M. Gibbs and E. Latzko), pp. 445—455, New York, Springer-Verlag, 1979.
40. I.rrch R. M„ Murphy D, /. The cooperative function of chloroplasts in the biosynthesis of small molecules. In: The Intact Chloroplasts, (ed. J. Barber), pp. 366—401, Amsterdam, Elsevier/North-Holland Biomedical Press, 1976.
41. Miflin B. J., Lea P. J. Amino acid metabolism, Ann. Rev, Plant Physiol., 28, 299—332 (1977).
42. Moore R., Black С. C. Nitrogen assimilation pathways in leaf mesophyll and bundle sheath cells of C4 photosynthesis plants formulated from comparative studies with Digilaria sanguinalis (L), Scop, Plant Physiol., 64, 309—313 (1979).
43. Osmond С. B., Smith F. A. Syiuplaslic transport of metabolites during С« photosynthesis. I11: Intercellular Communication in Plants: Studies on Plas-
modesmata, (eds. В. Е. S. Gunning and A. W. Robards), pp. 229—240, New York, Spriuger-Verlag, 1976.
44. Rathnam С. К. М., Edwards Q. E. Distribution of nitrate assimilating enzymes between mesophyll protoplasts and bundle sheath cells in leaves of three groups of C4 plants, Plant Physiol,, 57, 730—733 (1976).
45. Rathnam С. К. М., Edwards G. E, C4 acid decarboxylation and C02 donation to photosynthesis in bundle sheath strands and chloroplasts from species representing three groups of C4 plants, Arch, Biochem, Biophys., 183, 1—13 (1977).
46. Rathnam С. К. М., Edwards G. E. C4-dicarboxylic—acid metabolism in bundle sheath chloroplast, mitochondria and strands of Eriochloa borumetisis, a PEP-carboxykinase type C4 species, Planta, 133, 13S—144 (1977).
47. Ray У’. B., Black С. C. luhibiLion of oxaloaeetate decarboxylation during C4 photosynthesis by 3-mereaplopieolinic acid, J. Biol. Chem., 251, 6824—6826 (1976a).
48. Ray Т. B„ Black С. C. Characterization of phosphoenolpyruvate carboxyki-nase from Panicum maximum. Plant Physiol., 58, 603—607 (1976b).
49. Repo E„ Hutch M. D. Photosynthesis in Goinphrena celosioides and its classification amongst Crpathway plants, Aust. J. Plant Physiol., 3, 863—876 (1У76).
50. Robards A W. Plasmodesmata, Ann. Rev. Plant Physiol., 26, 13—29 (1975),
51. Sugiyama T. Proteinaceous factor reactivating an inactive form of pyruvate, Pi dikinase isolated from dark treated maize leaves, Plant Cell Physiol.,
15, 723—726 (1974),
52. Uedan K-, Sugiyama T. Purification and characterization of phosphoenolpyru-vate carboxylase from maize leaves, Plant Physiol,, 57, 906—910 (1976).
53. Usudu IL, Edwards G. E. Localization of g'lycerate Kinase and some enzymes for sucrose synthesis in C3 and C4 plants, Plant Physiol., 65, 1017— 1022 (1980).
54. Usuda H., Kami R., M'ujachi S, Carbon dioxide assimilation and photosystem II deficiency in bundle sheath strands isolated from C4 plants, Plant Cell Physiol., 16, 4-85—494 (1975),
55. Utter М. E., Kolen-brander H, M, Formation of oxaloaeetate by CO2 fixation on phosphoenolpyruvate. In: The Enzymes, Vol. VI (ed. P. D, Boyer), pp. 117—168, New York, Academic Press, 1972.
56. Walker D. A. Physiological studies on acid metabolism 7, Malic enzyme from Kalanchoe crenata; effects of carbon dioxide concentration, Biochem. J,, 74, 216—223 (1960).
ГЛАВА 13
Фотодыхание
Краткое содержание
Фотодыхание, как следует уже из самого названия, — это дыхание на свету. У Сз-растений его можно обнаружить самыми различными способами, и все результаты, полученные с помощью этих способов, свидетельствуют о том, что у С^растепий фотодыхание скорее всего отсутствует. Точно измерить абсолютную интенсивность фотодыхания очень трудно, так как в стационарных условиях на свету фотосинтез и фотодыхаиие идут одновременно. Считают, что исходным субстратом для «светового дыхания» служит гликолат. Место разветвления процессов фотоды-хапня и фотосинтеза находится па уровне РуБФ-карбоксилазы-окс.пгепазы. Кислород, взаимодействуя с РуБФ, обеспечивает и синтез гликолата, и фотодыхание, а СОг, вступая в реакцию с РуБФ, обеспечивает фотосинтез. Если отношение 0й/С02 становится достаточно высоким, растения начинают иа свету дышать и фотосинтезировать с одинаковой скоростью (это происходит, например, в компенсационном пункте). И наоборот, когда отношение 02/С02 невелико, как, например, в клетках обкладки проводящих пучков во время Сгфотосинтеза, активность фотодыхания сравнительно мала. Кислород и СОг ведут себя как субстраты, конкурирующие друг с другом за взаимодействие с РуБФ-карбоксилазой-окспгепазой (т. е. Ог ингибирует карбок-силазу, а С02—оксигепазу). Поэтому ингибирование фотосинтеза кислородом у Сз-растений обусловлено подавлением кар-боксшшроваиия под действием О2 и синтезом гликолата, что в итоге ведет к стимуляции фотодыхания.
