Общая аллергология - Адо А.Д.
Скачать (прямая ссылка):
Особого внимания заслуживают исследования, в которых с помощью теста ППН и специально приготовленных тканевых антигенов оценивали проявления аутосенсибилизации при хронических заболеваниях легких, центральной нервной системы и др. (А. П. Чуприков, 1966; М. И. Китаев, И. Б. Засухиыа, 1970; JI. О. Киласония, 1971).
Весьма перспективны попытки применить данную реакцию и для характеристики аллергии при вирусных заболеваниях (С. П. Карпов, 1967, и др.). Следует иметь в виду, что как при аутоиммунных процессах, так и при вирусных заболеваниях парентеральное введение тканевых антигенов встречает обоснованные возражения. Важно подчеркнуть, что дальнейшее внедрение в аллергологическую практику теста ППН, равно как и других методов диагностики аллергии in vitro, требует выпуска специально подобранных и стандартных дозировок препаратов.
ТКАНЕВЫЕ ТУЧНЫЕ КЛЕТКИ И БАЗОФИЛЫ КРОВИ ПРИ АЛЛЕРГИИ
Ткапевые тучные клетки и базофильные лейкоциты играют важную роль при аллергических реакциях немедленного типа, принимая участие в освобождении гистамипа, гепарина и, возможно, серотонина (Rorsman, 1962). Сравнительное содержание базофилов и тучных клеток у человека и животных приведено в табл. 80.
Таблица 80
Сравнительное количество базофильных лейкоцитов и тканевых тучных клеток у человека и различных лабораторных животных (по Micliels, 1963)
Базофилы, % Тканевые тучные клетки
Взрослые люди 0,35---0,45 Много
Дети 3---6 » в тимусе
4_8
Кролик 4-11
11,06 Относительно мало
Морская свинка 1---3 » в сальнике
Собака Очень мало » печени
Кошка » » Очень мтаого в лимфа
тических узлах
Крюсы и мыши » » Очень мнооч>
Лягушка 5---7 » »
18---23 » »
23 » »
Действительно, для большинства видов животных местом содержания и источником освобояедения гистамина при анафилаксии оказываются тучные клетки. Тучная клетка крысы, по данным Ungar (1956), имеет диаметр 10—15 мкм, содержит 250—300 гранул. Содержание гистамина в 10-6 клеток составляет 20—15 мкг. Соответственно в этом количестве содержится 1 мкг серотонина и 70—90 мкг гепарина. Только у некоторых животных биологически активные вещества, в том числе и гистамин, освобождаются и из других клеток — из тромбоцитов у кроликов (Humphrey, Jaqu.es, 1954, 1955), из базофилов крови у человека (Graliam et al., 1955).
У разных животных процесс повреждения тучной клетки и выход гистамина протекают различно. У морских свинок гранулы разрушаются,
как бы исчезают из тучной клетки. Этот процесс называют дегрануляцией. У крыс возникает выхождеиие гранул из клетки, и они располагаются вне клетки, около нее. Этот процесс называют повреждением с разрывом клетки (disruption). Наконец, под влиянием препарата 48/80 у морских свинок наблюдается «выплавление» (fusion) метахроматического материала из гранул тучной клетки, сопровождающееся освобождением гистамина:,
Л. М. Ишимова и Л. И. Зеличенко (1967) исследовали морфологию тучных клеток брыжейки крыс в опытах с пассивной сенсибилизацией in vitro сывороткой кроликов, сенсибилизированных пыльцой тимофеевки. В этих опытах после инкубации тучных клеток с антителами против пыльцы тимофеевки и дальнейшего их контакта со специфическим аллергеном наблюдали альтерацию тучных клеток, выражающуюся в их разбухании, увеличении в размере, вакуолизации, экструзии гранул с потерей метахро-мазии. Процент дегрануяироваиных клеток колебался от 43 до 90. Однако степень дегрануляции и выраженность морфологических изменений не зависели от титра циркулирующих антител. Это дало возможность допустить, что иммунная сыворотка кролика содеряшт наряду с преципитиру-ющими антителами специальный цитофильный тип антител, обусловливающий альтерацию тучных клеток. Можно думать, что по своей природе они близки к антителам, «сенсибилизирующим тучные клетки» по Мота, обусловливающим анафилаксию тучных клеток у активно сенсибилизированных крыс.
Исследования, проведенные в последние годы, позволили пересмотреть механизм запуска аллергической реакции тучных клеток (И. С. Гущин, 1973—1976). Основным результатом этих исследований явилось установление того, что аллергическая реакция тучных клеток запускается не за счет их повреждения, а путем активации их функции. Следует напомнить прежде всего те факты, которые свидетельствуют об отсутствии повреждения изолированных тучных клеток после воспроизведения анафилактической реакции, оцениваемой по высвобождению гистамина.
Так, оказалось, что мембранный потенциал, регистрируемый при помощи внутриклеточных стеклянных микроэлектродов от изолированных тучных клеток, не изменяется после перенесения ими анафилактической реакции (И. С. Гущин и др., 1974). С другой стороны, механическое повреждение или цитотоксическое воздействие (тритоном Х-100) на тучные клетки сопровождается исчезновением мембранного потенциала. Во время анафилактической реакции тучных клеток из них не высвобождаются внеграиулярные цитоплазматические включения. Об этом свидетельствует отсутствие высвобождения из клеток лактатдегидрогеназы и АТФ и предварительно инкорпорированного в клетки 42К (Jolmsen, Moran, 1969; Kali-ner, Austen, 1974).